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miércoles, 3 de junio de 2009

Desarrollo de practica no. 4

Desarrollo:

Se colocaron las cajas petri sobre la mesa cada una va con sus siembras en el campo de esterilizacion hecho con los mecheros de bunsen.

Despues se observaron cada una de las cajas petri para despues ser abiertas.

Cada compañero de mesa tenia que abrir su medio de cultivo, tuvimos que describir cada uno sobre lo que vimos y olimos, se observo un crecimiento de colonias bacterianas, tambien se registraron los colores y texturas de cada una de ellas, se midieron y se registraron con graficos.

Materiales:
*Mecheros de Bunsen (2)
*Vernies o pie de rey
*Papel blanco para cubrir mesa
*Masking tape
*Medios de Cultivo (8, sembrados)
*Encendedor.

Desarrollo de practica no. 2

Desarrollo:

Despues de entregado el material, los mecheros dueron encendidos y los tubos de ensaye y el vaso de precipitado fueron colocados en el area de esterilizacion.

El tubo de ensaye conico fue llenado con 10 mL de muestra de orina y el tubo de ensaye con tapon rojo fue llenado con la muestra de sangre de la compañera Itzel Berenice Arreguin. La orina y la sangre entraron en la centrifuga por 5 min a 1500 revoluciones. La orina salio de la centrifuga a las 10:57 am y la sangre a las 10:58 am.

Los medios de cultivo iniciaron a ser entregados 6 medios de cultivo por mesa (en nuestro caso se entregaron 8, puesto que somos 9 integrantes del equipo) y fueron acomodados en el area de esterilizacion por radiacion (en medio de los dos mecheron, sobre el papel blanco para cubrir mesa).

Se tomaron las muestrasde raspados interdigital e interdental.

Se esterilizaron las asas bacteriologicas y se iniciaton los diferentes tipos de siembras.
*Extension masiva
*Dispercion
*4 Estrias
*Simple
*Kass
*Agotamiento

Una vez terminadas todas las siembras, se etiquetaron las cajas petri con el nombre de la muestras, el nombre de la siembra, el nombre de la persona que lo realizo, el numero de mesa.

Despues se apilaron. se sellaron con markin tape y se entregaron para ser colocadas en la estufa de incubacion.

Materiales:
*Tubo de Ensaye con tapon rojo
*Tupo de ensaye conico
*Medios de cultivo realizados en cajas petri (8)
*Mecheros de Bunsen (2)
*Masking Tape
*Papel blanco para vestir mesa
*Encendedor
*Asas Bacteriologicas (8)
*Muestras de:
a) Plasma (de la sangre)
b)Agua de Verdura
c) Orina
d)Agua Fresca
e)Agua destilada
f) Caldo de frijoles descompuestos
g) Interdental
h) Interdigital

Desarrollo de practica no. 1

Desarrollo:

1. Se habilita el equipo de esterilizacion autoclave y se carga con agua destilada.

2. Habilitar linea de gas LP

3. Con la regla de tres se rehidrata el polvo reactivo, pesamos el medio de cultivo despues se mezcla el medio con agua destilada (la indicada) con la varilla de cristal, luego se reposa, con los mecheros prendidos se hace el proceso de ebullicion con muñequeo por encima de la llama azul y se retira y se repite hasta qe sea un minuto, o hasta qe hierva el medio.

4. Despues se taponea con algodon y cinta adesiva y se etiqueta con el numero de mesa, nombre del medio, fecha y hora.

5. Se deposita en autoclave y se deja el tiempo que con anterioridad se dio cuando fue entregado el apunte de manejo de equipo de esterilizacion autoclave.


Materiales:
*Varilla de cristal
*Mecheros de Bunsen (2)
*Matraz erlenmeyer de 250 mL
*Embudo
*Medio de Cultivo (agar eosina y azul de metileno)
*Vaso de precipitado de 250 mL.
*Autoclave
*Agua Destilada (la necesaria)

Regla de Tres:

36 gr.---------1000mL
xgr ----------171mL

36 x 171= 6156
6156 / 1000= 6.156

x= 6.156 gr.

martes, 26 de mayo de 2009

Salmonelosis, tifoidea y brucelosis

Salmonelosis:
Los signos y síntomas de una infección por salmonela aparecen generalmente 12 a 72 horas después de que los microbios entran en el cuerpo. Se pueden prestentar cualquiera de los siguientes sintomas:
a) Dolor tipo cólico en el abdomen.

b) Diarrea que pueden tener sangre.
c) Fiebre o dolor de cabeza.
d) Náuse o vomito.
e) Pérdida de peso o deshidratación.

Tifoidea:
La fiebre tifoidea esta caracterizada por fiebre alta constante (40º), sudoración profusa, gastroenteritis y diarrea. Menos comúnmente puede aparecer un sarpullido de manchas aplanadas de color rosáceo. Tradicionalmente se divide en cuatro fases, durando cada una de ellas una semana aproximadamente.
a) Primera semana: Durante esta fase sube lentamente la temperatura con una bradicardia relativa, malestar general, dolor de cabeza y tos. Se ha observado Epistaxis en una cuarta parte de los casos. Hay leucopenia con eosinopenia y linfocitosis relativa.
b) Segunda semana: Durante esta fase se produce la postración. Llegando la fiebre al culmen de los 40º C. Hay bradicardia con un pulso dicrótico. El delirio es frecuente. En un tercio de los pacientes se han observado puntos rojos en la parte inferior del pecho y abdomen. Hay respiración agitada. El abdomen esta distendido y dolorido en cuadrante derecho inferior. La diarrea puede también ocurrir en esta fase (6 - 8 deposiciones por día), de apariencia verde y olor característico con apariencia de puré de guisantes. No obstante el estreñimiento también es frecuente. El Bazo e hígado están inflamados con un aumento del nivel de transaminasas.
c) Tercera semana: En esta semana si la fiebre tifoidea no se trata, las complicaciones son frecuentes: Hemorragias Intestinales, Perforación intestinal en el Íleon que puede dar lugar a peritonitis abscesos que pueden derivar en encefalitis, colecistitis, y endocarditis. La fiebre es alta.Finales de Tercera semana/Principios de la cuarta: La temperatura corporal se va restableciendo, pero el debilibitamiento aun persiste


Brucelosis:
Sintomatología inicial es fiebre, cefalea, dolor vertebral con afectación de las articulaciones sacroilíacas y adenopatías (inflamación de los ganglios) en el 50% de los afectados. En casos más graves puede producir endocarditis y neumonía. La fiebre suele subir durante la noche y disminuir durante el día, con períodos de oscilación.

Bacilos y cocos

Bacilos:

Tienen una forma como de baston, alargados, que a su vez pueden tener varios aspectos:

a) Cilindricos
b) Fusiformes
c) En forma de maza, etc.

Son seres generalmente unicelulares que pertenecen al grupo de los protitos inferiores. Son celulas de tamaño variable cuyo limite inferior esta en los 0.2 mm y el superior en los 50 mm; sus dimensiones osilan entre 0.5 y 1 mm
. Cocos:

Celulas mas o menos de forma esferica.

Atendiendo a los tipos de extremos, estos pueden ser:

a) Redondos (los mas frecuentes).
b) Cuadrados
c) Biselados
d) Afilados


Frotis

Un frotis de sangre es un proceso cientifico que consiste en la existencia de una gota de sangre en la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos con el fin de analizarla posteriormente.

Es mas adecuado emplear sangre que aun no ha estado en contacto con anticoagulante, pues este podria alterarla y alterar los resultados (algunos anticoagulantes tienden a deformar las celulas de la sangre).

Su realizacion es de vital importancia para obtener una orientacion de:
a) La valoracion de la estimulacion eritropoyetica.
b) Las anomalias de la maduracion nuclear y citoplasma de las celulas.
c) Los transtornos en la arquitectura de las celulas al formarse en ña medula osea.
d) Las alteraciones singulares en la forma de las celulas, que son identificacion especifica de algunas
enfermedades.
e) Algun indicador de los efectos nocivos de la quimioterapia y de la radioterapia.
f) La diferenciacion y recuento de los elementos celulares de la sangre.

La fidelidad de la informacion obtenida de ellos, depende de gran parte de la calidad de las extenciones. Estas no deben ser demasiado gruesas porque las celulas se amontonarian y no podrian ser reconocidas, ni diferenciarse, ni demasido delgadas porque las celulas se deformarian, distorcionarian y destrozarian.

miércoles, 13 de mayo de 2009

medios de cultivo

solucion que cuenta con nutrientes necesarios para recuperar, multiplicar, aislar e identificar los microorganismos, asi como efectuar pruebas de suceptibilidad. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino, al prepararse podemos encontrarlos en estado sólido semisólido y líquido.
Clasificacion de Medios de Cultivo
Líquido: No contienen ningún tipo de agente solidificante y son también denominados caldos. Favorecen mucho el desarrollo y multiplicación de las bacterias porque al difundirse éstas por todo el medio encuentran con facilidad las sustancias que necesitan para nutrirse.
Semisólido: Presentan agar en su composición e una proporción menor al 5% (2,5g/L). Se utiliza especialmente para el estudio de algunas propiedades bioquímicas (oxidación-fermentación).
Sólido: Se utiliza un agente solidificante (el agar) en una proporción por encima del 15% (12-15 g/L). En ellos las bacterias crecen con mayor dificultad, pues los nutrientes se agotan con rapidez en el punto donde se desarrollan no obstante nos permite el aislamiento, purificación y visualización de su crecimiento en colonias.
Tipos de siembra
Tubos con agar inclinado.
Tubos sin inclinar.
Siembra en placas.

Enterobacteria

a) Escherichia Coli: Bacteria que se encuentra generalmente en los intestinos animales y por ende en las aguas negras. Esta y otras bacterias son necesarias para el funcionemiento correcto del proceso digestivo. Produce vitaminas By K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tincion de Gram. Movil por flagelos peritricos, no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa.




b) Salmonella Thipy: Formada por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos peritricos y wue no desarrollan capsula ni esporas. Son bacterias moviles que producen sulfuro de Hidrogeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzina especializada, pero no lactosa. Se transmiten por contacto directo o contaminacion cruzada durante la manipulacion.

c) Proteus: Bacteria gramnegativa, que incluye patogenos responsables de muchas infecciones del tracto urinario. Normalmente no fermentan lactosa. Algunas especies son monitles. Tienden a ser organismos pleomorficos, no esporulados ni capsulados d) Brucella Abortus:Es una bacteria Gram negativa con un lipopolisacárido (LPS) fuertemente inmunodominante, el que junto con la capacidad de sobrevivir en el interior de células fagocíticas constituyen sus principales factores de virulencia.

1er. tarea: Paramecio

Los paramesios (genero paramecium) son protozoos ciliados con forma de suela de zapato, habituales en aguas dulces estancadas con abundante materia organica, como charcos y estanques. Su tamaño ordinario es de apenas 0.05 mm.


Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. en su anatomia destaca el sitoplasma, conformado por particulas organicas flotantes y microorganismos menores.


los paramecios se alimentan de bacterias y otros organismos microscopicos, para atrapar su alimento, utilizan una boca en forma de ranura.

Cuestionario Pie de Rey

1.-es un instrumento para medir dimenciones de objetos relativamente pequeños. se atribuye al cosmografo y matematico portugues que se llama:
pierre vernier



2.-en que año se le atribuye el pie de rey al cosmografo y matematico portugues:(1492-1577)

3.-tambien se ha llamado pie de rey al:
vernier



4.-en que año se le atruibuye el pie de rey al geometra pedro vernier:
(1580-1637)



5.-que otro nombre recibe el origen del pie de rey?


nonio-nonius, vernier

1. Mordazas para medidas externas.
2. Mordazas para medidas internas.
3. Coliza para medida de profundidades.
4. Escala con divisiones en centímetros y milímetros.
5. Escala con divisiones en pulgadas y fracciones de pulgada.
6. Nonio para la lectura de las fracciones de milímetros en que esté dividido.
7. Nonio para la lectura de las fracciones de pulgada en que esté dividido.
8. Botón de deslizamiento y freno.

Practica 3: Pipeteo

OBJETIVO:
El alumno tecnico en laboratorio clinico aprendera a pipetear correctamente y asi no tomar de la muestra que se quiere , tambien se medira la cantidad deseada con la ayuda de una probeta.
INSTRUCCIONES:
Dentro del procedimiento se va a llevar a cabo la actividiad de pipetear y medir el liquido señalado.el pipeteo debe ser de una forma ordenada y para ello se ocupa una probeta donde se depositara el liquido indicado individualmente. ^
*Antes de hacer bada se debe recibir cuidadosamente el material y verificar que no este en mal estado, para ello se debe llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.
MARCO TEORICO:
Llegamos al laboratorio con el equipo de bioseguridad ya puesto.se nos entrego el material que utilizariamos el cual fue:
probeta
caja petri
pipeta de thomas
pipeta automatica
pipeta
pipeta
pipeta
Se empezo esta practica con cada uno de los integraantes de equipo, pero antes se nos separo en dos grupos para asi tener un mejor desempeño.

La idea de esta practica fue aprender a succionar el agua para no tragarnosla y saber si la medida que succionabamos era la deceada.

Lo suguiente que hizimos fue con la pipeta de thomas agarrar una gota y ponerla en una caja petri para luego succionarla con la pipeta automatica y poder saber si la medida de una gota de agua son 10 microlitros.

Luego las gotas las comparamos para ver con nuestros propios ojos que son iguales.

Pratica 2: Pesos y medidas

OBJETIVO:
El alumno tecnico en laboratorio clinico aprendera a peasr y medir adecuadamente con la balanza granataria los materiales de criztaleria usados en las diferentes areas del alboratorio, teniendo como finalidad saber sus diferentes pesos al hacer un medio de cultivo o cualquier utra cosa.
INSTRUCCIONES:
Dentro del procedimiento se va a llevar acabo la actividad de pesar y medir los materiales de cristaleria asi como las sustancias, solventes y otro tipo de reactivos que se soliciten.Los pesos y medidas deben de ser en forma ordenada y para ello se ocupa una balanza granataria donde se depositaran materiales ya indicados de forma individual registrando los pesos de cada uno.una vez teniendo los pesos de los materiales se le aplicara un reactivo, ya sea solido, polvo o liquido y se registrara el peso con el reactivo y asi poder llegar a ocupar nuestro sistema metrico decimal y anglosajon.antes de hacer nada se debe resibir cuidadosamente el material y verificar que no este en mal estado. Para ello se debe llenar una forma de laboratorio de solicitud de materiales.
MARCO TEORICO:
Llegamos al laboratorio de quimica a las 8:00 de la mañana, entramos y nos pusimos nuestro equipo de bioseguridad (bata, guantes, cubrebocas,gorro).primero, el profesor nos dio las indicaciones.empezando por explicar la razon del equipo de bioseguridad.nos llamo mesa por mesa para entregarnos el equipo de cristaleria:

pipeta pasteur
pipeta de sally
vaso de presipitado
lamina escabada
tubos de ensayo
probeta graduada 20º
pipeta volumetrica 20º
pipeta graduada 010 ml
pipeta graduada 20º/1.00 ml
caja petri
vidrio de reloj
balanza
espatula

Empezamos midiendo cada uno de ellos con la balanza granataria:

espatula - 49.2 gr
pipeta pasteur - 2.4 gr
vaso de presipitados - 4 gr
lamina escabada - 21.5 gr
tubo de ensayo - 7.2 gr
probeta graduada 20º - 134.4 gr
pipeta volumetrica 20º - 21.4 gr
pipeta graduada 010 ml - 14.6 gr
pipeta graduada 20º/1.00 ml
caja petri - 84.8 gr
vidrio de reloj - 17.2 gr

Cuando terminamos de medir cada material, medimos el agua y la sal que dieron; para medirlo tuvimos que usar los materiales ya medidos y restamos el esultado obtenido con el resultado que ya teniamos:
caja petri c/sal : 64.72 gr
agua en el cristalizador : 90.7 gr
gota de agua en lamina escabada : 21.51 gr
papel con sal : 21.2 gr
RESULTADOS:
agua: 90.7gr - 84.8 gr = 5.9 gr
gota de agua : 21.51gr - 21.5gr = 0.01 gr
sal: 21.2 gr - 0.04 gr = 21.16 gr

el profesor dio sal simulando un medio de cultivo y pidio que con esta se sacaran cuatro cajas petri:
*medio de cultivo: agar dextrosa y papa = 39 gr -->1 lt
caja petri: 19 ml
39 gr ---> 1000 ml
X gr ---> 19 ml
X= (39 gr * 19 ml) /1000 ml = 0.741
para cuatro cajas: 2.964 gr de agar dextosa y papa

Realizacion de medio de cultivo

I.- realizar los problemas correspondiantes al medio de cultivo (reactivo)
1.-anotar el nombre del medio de cultivo que se nos facilita, con todos los datos visibles en su etiqueta:medio de cultivo:- agar de mueller hinton (pruebas de sensibilidad a antibioticos y cultivo de neisseria)hecho por: DIBICO SA. DE CV.*agente de diagnostico*Reg.NO.01700R84SSAcontenido neto: 450 grNo. lote: 6620035caducidad: 1/mar/2007catalogo:No. 1021-A
2.-leer cuidadosamente las indicaciones que contiene el bote del medio de cultivo
.3.- rehidratar el contenido para 1000 ml, del cual debera ocupar un porcentage para rehidratar en 250ml, 175ml y 138ml.
4.-las operaciones deben de ser con numeros basicos como +,-, / y multiplicacion.*OPERACIONES:1000 ml ---> 38 gr250 ml ---> X grX= (250 ml * 38 gr)/1000 ml = 9.5 gr__________________________________________________1000 ml ---> 38 gr175 ml ---> X grX=(175 ml * 38 gr)/1000 ml =6.65 gr__________________________________________________1000 ml ---> 38 gr138 ml ---> X grX=(138 ml * 38 gr)/1000 ml=5.244 gr

Recuento de eritrocitos

Observe que en la grilla de la cámara de Neubauer las áreas de recuento de eritrocitos y linfocitos son diferentes. Los glóbulos rojos se cuentan en las áreas coloreadas de rojo, mientras que los glóbulos blancos se cuentan en las áreas coloreadas de azul. Ten en cuenta que la grilla central tiene 25 cuadrados de 1mm x 1mm de área y 0.10 mm de profundidad. El factor de dilución es por tanto de 1:200. Convierte el número de glóbulos rojos contados en 5 cuadrados a nº glóbulos rojos/µl. (1 µl (microlitro) = 1 mm3 )
La imagen de abajo simula el campo que esta viendo al microscopio con un objetivo de 45x. Solo es visible el centro de la grilla. Intenta verificar esto al ir moviendo el campo de derecha-izquierda y de arriba-abajo, como si de una pletina de microscopio se tratase. Cuenta los glóbulos rojos en los cinco cuadrados mencionados anteriormente y determina el recuento de eritrocitos como se ha descrito anteriormente.. Muy importante: Cuando un eritrocito se sitúa en mitad de las líneas superior y/o de la izquierda, entonces es contabilizado. Pero no se contabiliza cuando se sitúa en mitad de las líneas inferior y/o de la derecha..
El rango normal de recuento de glóbulos rojos es el siguiente:
Mujeres:3.9-5.6 millones/µlHombres:4.5-6.5 millones/µl
TÉCNICAS DE CONTAJE CELULARUna suspensión celular se caracteriza por presentar un número de partículas microscópicas dispersas en un fluido. Habitualmente será necesario determinar tanto la densidad de las células en la suspensión como el porcentaje de éstas que son viables.Para determinar la densidad de las células se emplean diferentes técnicas, desde la relativamente simple cámara de contaje celular de la que existen numerosas variantes, entre ellas la que empleamos (cámara de Neubauer), hasta equipos automáticos de contaje celular como el "Cell Coulter" de la empresa Beckman-Coulter.
El principio del contador celular se basa en la medida de los cambios en la resistencia eléctrica que se producen cuando una partícula no conductora en suspensión en un electrolito atraviesa un pequeño orificio. Como se puede ver en el esquema, una pequeña abertura entre los electrodos es la zona sensible a través de la que pasan las partículas que se encuentran en suspensión. Cuando una partícula atraviesa el orificio desplaza su propio volumen de electrolito. El volumen desplazado es medido como un pulso de voltaje. La altura de cada pulso es proporcional al volumen de la partícula. controlando la cantidad de la suspensión que circula a través del orificio es posible contar y medir el tamaño de las partículas. Es posible contar y medir varios miles de partículas por segundo, independientemente de su forma, color y densidad.
En la unidad de Citometría de flujo y Microscopia Confocal de los Servicios Científico-Técnicos de la Universidad de Barcelona se dispone de contadores celulares.Sin embargo, es posible determinar la densidad celular empleando métodos más sencillos. Nos basta con una cámara de contaje celular, por ej. la cámara de Neubauer, y un microscopio. Una cámara de contaje celular es un dispositivo en el que se coloca una muestra de la suspensión a medir. El dispositivo presenta unas señales que determinan un volumen conocido (x microlitros). Al contar bajo el microscopio el número de partículas presentes en ese volumen se puede determinar la densidad de partículas en la suspensión de origen.
La cámara de Neubauer es una cámara de contaje adaptada al microscopio de campo claro o al de contraste de fases. Se trata de un portaobjetos con una depresión en el centro, en el fondo de la cual se ha marcado con la ayuda de un diamante una cuadrícula como la que se ve en la imagen. Es un cuadrado de 3 x 3 mm, con una separación entre dos lineas consecutivas de 0.25 mm. Así pues el área sombreada y marcada L corresponde a 1 milimetro cuadrado. La depresión central del cubreobjetos está hundida 0.1 mm respecto a la superficie, de forma que cuando se cubre con un cubreobjetos éste dista de la superficie marcada 0.1 milímetro, y el volumen comprendido entre la superficie L y el cubreobjetos es de 0.1 milímetro cúbico, es decir 0.1 microlitro.
Si contamos las cuatro áreas sombreada (L) observando un total de x células entre las cuatro áreas, la concentración en la suspensión celular será :concentración en la suspensión (células / mL) = 10000 (x/4)
En la imagen puedes observar el aspecto de una de las regiones marcadas como L y que en el microscopio se ven como una cuadrícula de 16 pequeños cuadrados de 0.25 milímetros de lado. Esta imagen ha sido tomada empleando un microscopio invertido de contraste de fases
Existen numerosos modelos de cámaras de contaje celular adaptadas a su uso en microscopía. En la imagen puedes observar una cámara de Neubauer doble, como las que usas en el laboratorio de prácticas.
Para determinar la viabilidad celular se emplean diferentes métodos. El más común es el de tinción con azul tripán. El azul tripán es un coloide que se introduce en el interior de las células que presentan roturas en la membrana. Así pues las células que aparecen en la imagen, claramente de color azul, son consideradas no viables. Asimilar células blancas, por exclusión, a células viables es un error pues por este método se sobrevalora la viabilidad de las células en la suspensión, determinando como inviables sólo aquellas con la membrana rota. Existen otros métodos de determinación de la viabilidad celular como el más preciso de la tinción con ioduro de propidioEn la red dispones de descripciones detalladas sobre como utilizar un hemocitómetro, como la propuesta por P.J. Hansen, o la detallada descripción que aporta Beckton-Dickinson, y los problemas de cálculo de parámetros celulares que plantea empleando datos obtenidos a partir de un hemocitómetro, y otros protocolos para el contaje de células
1.se aseptiza el dedo con alcohol y luego se seca al aire o con algodón. Se coge entre el pulgar y el índice y se hace una punción rápida y penetrante a través de la piel de la punta del dedo con una lanceta estéril.2. Se deshecha la primera gota de sangre y se aspira la siguiente con la pipeta de dilución perfectamente limpia y seca hasta la señal 1 o 0.5 (también puede utilizarse la pipeta de hemoglobina, de 20 microlitros). Hay que evitar la entrada de burbujas de aire, pudiendo ayudarnos de un papel de filtro para conseguir el enrasado.3. A continuación se toma con la pipeta líquido de Hayem, isotónico con la sangre, hasta la señal 1; así, la sangre queda diluida al 1/10, si tomamos sangre hasta la señal 1, o al 1/20 si tomamos hasta 0.5. Esto es así porque el volumen de la bola de la pipeta es 100 veces superior al del capilar de la misma. (Si hemos utilizado la pipeta de hemoglobina podemos diluir su contenido en 2 o 4 ml de líquido de Hayem para obtener diluciones 1/100 o 1/200).4. Tomamos la pipeta (o el tubo de ensayo) entre los dedos índice y pulgar y agitamos. A través de la goma de conexión con la pipeta, soplamos para despreciar las primeras gotas por corresponder al líquido que estaba en el capilar.5. Se adapta un cubreobjetos sobre una cámara cuentaglóbulos limpia y seca y se coloca una gota en uno de los lados del cubre; esta gota penetra por capilaridad y rellena el retículo de la misma.6. Una vez preparada la cámara se coloca sobre la platina del microscopio dejándose unos minutos en reposo para que sedimenten los glóbulos. Disponemos el condensador bajo y luz débil; enfocamos primero con el objetivo débil seco y luego se cambia al fuerte seco para proceder al recuento, que se lleva a cabo en los cuadrados pequeños del retículo marcado en color rojo. Finalizado el recuento se procede a la limpieza de la pipeta con acético 1:3, agua destilada y alcohol-éter sucesivamente.
7.El volumen de sangre en el cual se han contado las células resulta de multiplicar la profundidad de la cámara por el factor de dilución, la superficie de los cuadrados y el número de cuadrados contados.Con cámara de NEUBAUER: Superficie de 1 cuadrado grande (1/20 mm de lado):Volumen de un cuadrado grande (1/10 mm de profundidad):Si contamos "a" glóbulos rojos en "n" cuadrados pequeños, el número de glóbulos por cuadrado será a/n.Si en un volumen 1/4000 mm3 hay a/n glóbulos rojos, en 1 mm3 habrá X. Luego: siendo X el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre diluida. Si la sangre se diluyó a 1/100 o 1/200, habrá que multiplicar el valor X por 100 o 200 respectivamente, con lo cual obtendremos un nuevo valor, Y, que representa el número de glóbulos rojos existentes por cada mm3 de sangre (sin diluir).

Se utilizan para calcular, mediante el uso del microscopio, el número de partículas (leucocitos, hematíes, bacterias…) por unidad de voluimen de un líquido.La cámara está constituida por una placa base de vidrio especial pareciso a un porta, su parte central se encuentra separada de los extremos por unas ranuras. en ella se encuentran las cuadrículas de recuento.La fórmula de contaje es: partículas/mm3= partículas contadas.Clases de cámaras:- Neubauer improved: Es el más utilizado (9 cuadros grandes, cada 1 de 1 mm2.)- Neubauer: La diferencia es el cuadro grande central.- Thoma: Se utiliza solo para el recuento de eritrocitos.- Fuchs-Rosenthal: Se utiliza habitualmente para recuento de células en líquidos orgánicos (LCR, Líquido sinovial…)

Pruebas serologicas

Es un examen de liquido seroso de la sangre que se utiliza para detectar la presencia de anticuerpos contra un microorganismo.
*temas centrales de pruebas serologicas:

identificar anticuerpos (proteinas hechas por clases de globulos como respuesta a un antigeno, una proteina extraña en el cuerpo)
investigar los problemas del tejido sistema inmunologico, como las enfermedades autoinmunologicas (cuando el sistema inmunologico del cuerpo ataca a sus propios tejidos) y los transtornos de inmunodeficiencia (cuando el sistema inmunologico del cuerpo no esta lo suficiente activo)
determina la compatibilidad de la sangra para transfuciones.

*reacciones febriles:
son un grupo de pruebas de aglutinacion que investigan la presencia en el suero del paciente, de anticuerpos contra cepas bacterianas patogenas que causan la fiebre de tifiodea, paratifoidea y brucelosis.

*pruebas de embarazo:
Hay dos tipos: en sangre y en orina.Una prueba de embarazo en sangre puede detectar la HCG más o menos 10 días después de la fecundación, incluso antes del retraso de la menstruación. En la orina, la hormona tarda un poco más en manifestarse y es necesario esperar cinco o nueve días luego de la fecha en que debería haber llegado el periodo, teniendo en cuenta que la mujer tenga ciclos regulares.Para la prueba en sangre se extrae una muestra del líquido y se deposita en un tubo para su posterior análisis. En cuanto a las pruebas de orina, por lo general se recogen unas gotas para ponerlas en un lugar determinado.

Apunte de clase (materiales)

iniciamos nuestra practica con la utilizacion de equipo de cristaleria en el termino de pipetas graduadas para realizar la actividad demandada de medicion de liquidos (volumen) de 1ml hasta 5ml.

En la cubeta para rotar de equipo cientifico llamado monarca se hace un baceado en cifra de microlitros (20 microlitros) y se utiliza la pipeta automatica graduada que en forma manual aplicamos la graduacion.con la misma pipeta graduada se toma una muestra de liquido y se deposita en el vidrio de reloj y se compara contra la cubeta del rotor.

Se comparan las medidas con todas las pipetas y los integrantes de la mesa deben de realizar la actividad de pipeteo.
*lamina de cristal para pruebas serologicas(inmunologia).su caracteriztica es excabada y algunas solo tienen un circulo plastico para contener el liquido que se deposite en el.

La pipeta pasteur la ocupamos con su lobulo de extraccion se utiliza para el conteo de la lamina de cristal.
*NOTA:borrador de la actividad de cada practica.

Camara de Neubauer

*CAMARA DE NEUBAUER:es un instrumento utilizado en cultivo celular para realizar conteo de celulas en un medio de cultivo liquido. consta de 2 placas de vidrio, entre ellas se puede alojar un volumen conocido como liquido.una de las placas posee una gradilla de dimenciones conocidos y que es visible al microscopio optico.para contar las celulas de un cultivo liquido, se agrega una gota de este entre estas dos caoas y observar el microscopio optico la cantidad de celulas presentes en un campo determinado de la gradilla.
*CELULAS DE LOS TOMATES:grandes celulas esfericas u ovoides, en cuyo citoplasma puede verse granulaciones enaranjadas que son los cromoplastos.tambien puede verse grandes vacuolas incoloras en celulas menos alteradas en el nucleo.
*CELULAS DE LAS CEBOLLAS:estan pueden ser vacuolas o bien burbujas de aire. celulas de catatilo de cebolla.

domingo, 22 de marzo de 2009

Moleculas inorganicas

Moleculas organicas e inorganicas y clasificacion de las moleculas implicadas en el cuerpo humano: Las biomoleculas organicas e inorganicas constituyentes de los seres vivos formados por solo cuatro elementos:
*Hidrogeno
*Oxigeno
*Carbono
*Nitrogeno
Representando el 99% de los atomos de los seres vivos.

1. Inorganicas:
El agua es la biomolecula mas abundante, gases(Oxigeno, Dioxido de Carbono), sales inorganicas, aniones como el fosfato(HPO4), Bicarbonato (HCO4) y cationes como el amonio (NH4)

Molecula de Agua:
Molecula conformada por Hidrogeno y Oxigeno(H2O), lo cual lo hace una molecula inorganica.

Moleculas Inorganicas en el Organismo Humano:
el agua como principal constituyente mas abundante en el cuerpo humano, se tiene que beber y no durar de 5 a 6 dias sin consumirlo.

*Sodio:
Sirve para mantener un balance de los sistemas de fluidos fisicos.
*Acido Nitrico:
Puro es un liquido viscoso, incoloro e inodoro. A menudo, impurezas lo colorean de amarillo-marron. A temperatura ambiente libera humos rojos o amarillos. Concentrado tiñe la piel humana de amarillo al contacto, debido a una reaccion con la Cistenia presente en la queratina de la piel (HNO3).
*Acido Nitroso:
Como acidos no es muy usado, pero se pueden obtener a partir de el los nitritos (sales).
*Peroxido de Hidrogeno:
Respiracion, cianosis, expectoracion, tos. Su mecanismo de accion se debe a la efermecencia que produce, ya que la liberacion de oxigeno destruye los microorganismos anaerobios estrictos, y el burbujeo de la solucion cuando entra en contacto con los tejidos.
*Acido Ortofosforico:
El Anion Fosfato es un componente esencial del cuerpo humano, normalmente se ingiere entre 1gr. y 2gr. de fosfato por personal al dia.

jueves, 12 de marzo de 2009

Microscopio Optico


Un microscopio óptico es un microscopio basado en lentes ópticas. El desarrollo de este aparato suele asociarse con los trabajos de Anton van Leeuwenhoek. Los microscopios de Leeuwenhoek constaban de una única lente pequeña y convexa, montada sobre una plancha, con un mecanismo para sujetar el material que se iba a examinar (la muestra o espécimen). Este uso de una única lente convexa se conoce como microscopio simple, en el que se incluye la lupa, entre otros aparatos ópticos. Partes del microscopio óptico y sus funciones
Ocular: lente situada cerca del ojo del observador. Amplía la imagen del objetivo.
Objetivo: lente situada cerca de la preparación. Amplía la imagen de ésta.
Condensador: lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación.
Diafragma: regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
Foco: dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
Lente ocular: Capta y amplia la imagen formada en los objetivos.
Tubo: es una càmara oscura unida al brazo mediante una cremallera.
Revólver: Es un sistema que coge los objetivos, y que rota para utilizar un objetivo u otro.
Tornillos macro y micrométrico: Son tornillos de enfoque, mueven la platina hacia arriba y hacia abajo. El macrométrico lo hace de forma rápida y el micrométrico de forma lenta. Llevan incorporado un mando de bloqueo que fija la platina a una determinada altura.
Platina: Es una plataforma horizontal con un orificio central, sobre el que se coloca la preparación, que permite el paso de los rayos procedentes de la fuente de iluminación situada por debajo. Dos pinzas sirven para retener el portaobjetos sobre la platina y un sistema de cremallera guiado por dos tornillos de desplazamiento permite mover la preparación de delante hacia atrás o de izquierda a derecha y viceversa. En la parte posterior de uno de los laterales se encuentra un nonius que permite fijar las coordenadas de cualquier campo óptico; de esta forma se puede acudir a el cuando interesa.
Sistema de iluminación

La fuente de luz 1, con la ayuda de una lente (o sistema) 2, llamada colector, se representa en el plano del diafragma iris de abertura 5 del condensador 6. Este diagrama se instala en el plano focal anterior del condensador 6 y puede variar su abertura numérica. El diagrama iris 3 dispuesto junto al colector 2 es el diafragma de campo. La variación del diámetro del diafragma de campo permite obtener su imagen igual al campo visual lineal del microscopio. La abertura numérica del condensador 6 supera, generalmente la de la abertura del objetivo microscópico

MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO


El microscopio compuesto

Un microscopio compuesto es un microscopio óptico que tiene más de un lente. Los microscopios compuestos se utilizan especialmente para examinar objetos transparentes, o cortados en láminas tan finas que se transparentan. Se emplea para aumentar o ampliar las imágenes de objetos y organismos no visibles a simple vista. El microscopio óptico común está conformado por tres sistemas:

  • El sistema mecánico está constituido por una serie de piezas en las que van instaladas las lentes, que permiten el movimiento para el enfoque.
  • El sistema óptico comprende un conjunto de lentes, dispuestas de tal manera que producen el aumento de las imágenes que se observan a través de ellas.
  • El sistema de iluminación comprende las partes del microscopio que reflejan, transmiten y regulan la cantidad de luz necesaria para efectuar la observación a través del microscopio.


La parte mecánica del microscopio.


La parte mecánica del microscopio comprende el pie, el tubo, el revólver, el asa, la platina, el carro, el tornillo macrométrico y el tornillo micrométrico. Estos elementos sostienen la parte óptica y de iluminación; además, permiten los desplazamientos necesarios para el enfoque del objeto.


· El pie. Constituye la base sobre la que se apoya el microscopio y tiene por lo general forma de Y o bien es rectangular.
· El tubo. Tiene forma cilíndrica y está ennegrecido internamente para evitar las molestias que ocasionan los reflejos de la luz. En su extremidad superior se colocan los oculares.
· El revólver. Es una pieza giratoria provista de orificios en los que se enroscan los objetivos. Al girar el revólver, los objetivos pasan por el eje del tubo y se colocan en posición de trabajo, lo que se nota por el ruido de un piñón que lo fija.
· La columna, llamada también asa o brazo, es una pieza colocada en la parte posterior del aparato. Sostiene el tubo en su porción superior y por el extremo inferior se adapta al pie.
· La platina. Es una pieza metálica plana en la que se coloca la preparación u objeto que se va a observar. Presenta un orificio, en el eje óptico del tubo, que permite el paso de los rayos luminosos a la preparación. La platina puede ser fija, en cuyo caso permanece inmóvil; en otros casos puede ser giratoria; es decir, mediante tornillos laterales puede centrarse o producir movimientos circulares.
· Carro. Es un dispositivo, colocado sobre la platina, que permite deslizar la preparación con movimiento ortogonal de adelante hacia atrás y de derecha a izquierda.
· El tornillo macrométrico. Girando este tornillo, asciende o desciende el tubo del microscopio, deslizándose en sentido vertical gracias a una cremallera. Estos movimientos largos permiten el enfoque rápido de la preparación.
· El tornillo micrométrico. Mediante el movimiento casi imperceptible que produce al deslizar el tubo o la platina, se logra el enfoque exacto y nítido de la preparación. Lleva acoplado un tambor graduado en divisiones de 0,001 mm., que se utiliza para precisar sus movimientos y puede medir el espesor de los objetos.


Sistema óptico

· El sistema óptico es el encargado de reproducir y aumentar las imágenes mediante el conjunto de lentes que lo componen. Está formado por los oculares y los objetivos. El objetivo proyecta una imagen de la muestra que el ocular luego amplía.

Los oculares:

· Están constituidos generalmente por dos lentes, dispuestas sobre un tubo corto. Los oculares más generalmente utilizados son los de: 8X, 10X, 12,5X, 15X. La X se utiliza para expresar en forma abreviada los aumentos.

Los objetivos:

· se disponen en una pieza giratoria denominada revólver y producen el aumento de las imágenes de los objetos y organismos, y, por tanto, se hallan cerca de la preparación que se examina. Los objetivos utilizados corrientemente son de dos tipos: objetivos secos y objetivos de inmersión


Los objetivos secos

· Se utilizan sin necesidad de colocar sustancia alguna entre ellos y la preparación. En la cara externa llevan una serie de índices que indican el aumento que producen, la abertura numérica y otros datos. Así, por ejemplo, si un objetivo tiene estos datos: plan 40/0,65 y 160/0,17, significa que el objetivo es planacromático, su aumento 40 y su abertura numérica 0,65, calculada para una longitud de tubo de 160 mm. El número de objetivos varía con el tipo de microscopio y el uso a que se destina. Los aumentos de los objetivos secos más frecuentemente utilizados son: 6X, 10X, 20X, 45X y 60X.

El objetivo de inmersión

· Está compuesto por un complicado sistema de lentes. Para observar a través de este objetivo es necesario colocar una gota de aceite de cedro entre el objetivo y la preparación, de manera que la lente frontal entre en contacto con el aceite de cedro. Generalmente, estos objetivos son de 100X y se distingue por uno o dos círculos o anillos de color negro que rodea su extremo inferior.

Sistema de iluminación

Este sistema tiene como finalidad dirigir la luz natural o artificial de tal manera que ilumine la preparación u objeto que se va a observar en el microscopio de la manera adecuada. Comprende los siguientes elementos:

Fuente de iluminación

Se trata generalmente de una lámpara incandescente de tungsteno sobrevoltada. Por delante de ella se sitúa un condensador (una lente convergente) e, idealmente, un diafragma de campo, que permite controlar el diámetro de la parte de la preparación que queda iluminada, para evitar que exceda el campo de observación produciendo luces parásitas.

El espejo

necesario si la fuente de iluminación no está construida dentro del microscopio y ya alineada con el sistema óptico, como suele ocurrir en los microscopios modernos. Suele tener dos caras: una cóncava y otra plana. Goza de movimientos en todas las direcciones. La cara cóncava se emplea de preferencia con iluminación artificial, y la plana, para iluminación natural (luz solar).

Condensador

El condensador está formado por un sistema de lentes, cuya finalidad es concentrar luminosos los rayos sobre el plano de la preparación, formando un cono de luz con el mismo ángulo que el del campo del objetivo. El condensador se sitúa debajo de la platina y su lente superior es generalmente planoconvexa, quedando la cara superior plana en contacto con la preparación cuando se usan objetivos de gran abertura (los de mayor ampliación); existen condensadores de inmersión, que piden que se llene con aceite el espacio entre esa lente superior y la preparación. La abertura numérica máxima del condensador debe ser al menos igual que la del objetivo empleado, o no se logrará aprovechar todo su poder separador. El condensador puede deslizarse verticalmente sobre un sistema de cremallera mediante un tornillo, bajándose para su uso con objetivos de poca potencia.

Diafragma

El condensador está provisto de un diafragma-iris, que regula su abertura para ajustarla a la del objetivo. Puede emplearse, de manera irregular, para aumentar el contraste, lo que se hace cerrándolo más de lo que conviene si se quiere aprovechar la resolución del sistema óptico

Trayectoria del rayo de luz a través del microscopio

El haz luminoso procedente de la lámpara pasa directamente a través del diafragma al condensador. Gracias al sistema de lentes que posee el condensador, la luz es concentrada sobre la preparación a observar. El haz de luz penetra en el objetivo y sigue por el tubo hasta llegar al ocular, donde es captado por el ojo del observador
____________________________________________________________________
Propiedades del microscopio

Poder separador

También llamado a veces poder de resolución, es una cualidad del microscopio, y se define como la distancia mínima entre dos puntos próximos que pueden verse separados. El ojo normal no puede ver separados dos puntos cuando su distancia es menor a una décima de milímetro. En el microscopio viene limitado por la longitud de onda de la radiación empleada; en el microscopio óptico, el poder separador máximo conseguido es de 0,2 décimas de micrómetro (la mitad de la longitud de onda de la luz azul), y en el microscopio electrónico, el poder separador llega hasta 10 Å.

Poder de definición

Se refiere a la nitidez de las imágenes obtenidas, sobre todo respecto a sus contornos. Esta propiedad depende de la calidad y de la corrección de las aberraciones de las lentes utilizadas

Ampliación del microscopio

En términos generales se define como la relación entre el diámetro aparente de la imagen y el diámetro o longitud del objeto. Esto quiere decir que si el microscopio aumenta 100 diámetros un objeto, la imagen que estamos viendo es 100 veces mayor linealmente que el tamaño real del objeto (la superficie de la imagen será 1002, es decir 10.000 veces mayor). Para calcular el aumento que está proporcionando un microscopio, basta multiplicar los aumentos respectivos debidos al objetivo y el ocular empleados. Por ejemplo, si estamos utilizando un objetivo de 45X y un ocular de 10X, la ampliación con que estamos viendo la muestra será: 45X x 10X = 450X, lo cual quiere decir que la imagen del objeto está ampliada 450 veces, también expresado como 450 diámetros.

Campo del microscopio

Se denomina campo del microscopio al círculo visible que se observa a través del microscopio. También podemos definirlo como la porción del plano visible observado a través del microscopio. Si el aumento es mayor, el campo disminuye, lo cual quiere decir que el campo es inversamente proporcional al aumento del microscopio. Para medir el diámetro del campo del microscopio con cualquiera de los objetivos se utiliza el micrómetro, al que se hará referencia en el siguiente punto.

Mantenimiento del microscopio

El microscopio debe estar protegido del polvo, humedad y otros agentes que pudieran dañarlo. Mientras no esté en uso debe guardarse en un estuche o gabinete, o bien cubrirlo con una bolsa plástica o campana de vidrio.

Las partes mecánicas

Deben limpiarse con un paño suave; en algunos casos, éste se puede humedecer con xilol para disolver ciertas manchas de grasa, aceite de cedro, parafina, etc. Que hayan caído sobre las citadas partes.

La limpieza de las partes ópticas requiere precauciones especiales

Para ello debe emplearse papel "limpiante" que expiden las casas distribuidoras de material de laboratorio. Nunca deben tocarse las lentes del ocular, objetivo y condensador con los dedos; las huellas digitales perjudican la visibilidad, y cuando se secan resulta trabajoso eliminarlas.


Para una buena limpieza de las lentes

Puede humedecerse el papel "limpiante" con éter y luego pasarlo por la superficie cuantas veces sea necesario. El aceite de cedro que queda sobre la lente frontal del objetivo de inmersión debe quitarse inmediatamente después de finalizada la observación. Para ello se puede pasar el papel "limpialentes" impregnado con una gota de xilol. Para guardarlo se acostumbra colocar el objetivo de menor aumento sobre la platina y bajado hasta el tope; el condensador debe estar en su posición más baja, para evitar que tropiece con alguno de los objetivos. Guárdese en lugares secos, para evitar que la humedad favorezca la formación de hongos. Ciertos ácidos y otras sustancias químicas que producen emanaciones fuertes, deben mantenerse alejados del microscopio.

Conclusiones
El Microscopio es: cualquiera de los distintos tipos de instrumentos que se utilizan para obtener una imagen aumentada de objetos minúsculos o detalles muy pequeños de los mismos. El microscopio simple o lente de aumento es el más sencillo de todos y consiste en realidad en una lupa que agranda la imagen del objeto observado. Las evidentes limitaciones de este sistema, conocido desde la antigüedad, y el desarrollo de la óptica y de la construcción de lentes hizo que surgieran en el siglo XVII los microscopios compuestos, diestramente utilizados por el holandés Antonie van Leewenhock en el estudio de la microfauna de los estanques y charlas. Estas observaciones, unidas a las de Robert Hooke, establecieron la microscopia como poderosa herramienta científica.
Normas generales de uso del laboratorio
Para el desarrollo de las prácticas es conveniente tener en cuenta algunas normas elementales que deben ser observadas con toda escrupulosidad
  1. Antes de realizar una práctica, debe leerse detenidamente para adquirir una idea clara de su objetivo, fundamento y técnica. Los resultados deben ser siempre anotados cuidadosamente apenas se conozcan.
  2. El orden y la limpieza deben presidir todas las experiencias de laboratorio. En consecuencia, al terminar cada práctica se procederá a limpiar cuidadosamente el material que se ha utilizado.
  3. Cada grupo de prácticas se responsabilizará de su zona de trabajo y de su material.
  4. Antes de utilizar un compuesto hay que fijarse en la etiqueta para asegurarse de que es el que se necesita y de los posibles riesgos de su manipulación.
  5. No devolver nunca a los frascos de origen los sobrantes de los productos utilizados sin consultar con el profesor.
  6. No tacar con las manos y menos con la boca los productos químicos.
  7. Todo el material, especialmente los aparatos delicados, como lupas y microscopios, deben manejarse con cuidado evitando los golpes o el forzar sus mecanismos.
  8. Los productos inflamables (gases, alcohol, éter, etc.) deben mantenerse alejados de las llamas de los mecheros. Si hay que calentar tubos de ensayo con estos productos, se hará al baño María, nunca directamente a la llama. Si se manejan mecheros de gas se debe tener mucho cuidado de cerrar las llaves de paso al apagar la llama.
  9. Cuando se manejan productos corrosivos (ácidos, álcalis, etc.) deberá hacerse con cuidado para evitar que salpiquen el cuerpo o los vestidos. Nunca se verterán bruscamente en los tubos de ensayo, sino que se dejarán resbalar suavemente por su pared.
  10. Cuando se quiera diluir un ácido, nunca se debe echar agua sobre ellos; siempre al contrario: ácido sobre agua.
  11. Cuando se vierta un producto líquido, el frasco que lo contiene se inclinará de forma que la etiqueta quede en la parte superior para evitar que si escurre líquido se deteriore dicha etiqueta y no se pueda identificar el contenido del frasco.
  12. No pipetear nunca con la boca. Se debe utilizar la bomba manual, una jeringuilla o artilugio que se disponga en el Centro.
  13. Las pipetas se cogerán de forma que sea el dedo índice el que tape su extremo superior para regular la caída de líquido.
  14. Al enrasar un líquido con una determinada división de escala graduada debe evitarse el error de paralaje levantando el recipiente graduado a la altura de los ojos para que la visual al enrase sea horizontal.
  15. Cuando se calientan a la llama tubos de ensayo que contienen líquidos debe evitarse la ebullición violenta por el peligro que existe de producir salpicaduras. El tubo de ensayo se acercará a la llama inclinado y procurando que ésta actúe sobre la mitad superior del contenido y, cuando se observe que se inicia la ebullición rápida, se retirará, acercándolo nuevamente a los pocos segundos y retirándolo otra vez al producirse una nueva ebullición, realizando así un calentamiento intermitente. En cualquier caso, se evitará dirigir la boca del tubo hacia la cara o hacia otra persona.
  16. Cualquier material de vidrio no debe enfriarse bruscamente justo después de haberlos calentado con el fin de evitar roturas.
  17. Los cubreobjetos y portaobjetos deben cogerse por los bordes para evitar que se engrasen.

Manejo y Uso del microscopio Compuesto

OBJETIVO: El alumno técnico en Laboratorio clínico aprenderá a usar y manejar adecuadamente el microscopio, aplicándolo en las diferentes áreas del laboratorio teniendo como finalidad el enfoque de los diferentes objetos que se le indiquen.

INTRODUCCION: Los alumnos de laboratorio clínico, deben de utilizar el microscopio de forma adecuada aplicando los conocimientos anteriormente aprendidos, para que puedan obtener un mejor funcionamiento y manejo del mismo ya que en el podrán observar diferentes estructuras diminutas que no se alcanzan a ver de forma microscópica.

MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO ÓPTICO COMPUESTO
Partes de un microscopio óptico

INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:

SISTEMA ÓPTICO
1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.

SISTEMA MECÁNICO
1. SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
2. PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
3. CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular…
4. REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
5. TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.

4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.

INSTRUCCIÓN:
1.- De acuerdo al grafico que se te indica, trata de identificar en forma ordenada las partes del microscopio.
2.- Sigue los pasos indicados para que puedas identificar usar y manejar cada una de las partes del microscopio
3.- Partes de un microscopio:

SISTEMA ÓPTICO
1. OCULAR: Lente situada cerca del ojo del observador (Amplia la imagen del objetivo)
2. OBJETIVO: Lente situada cerca de la preparación (Amplia la imagen de esta)
3. CONDENSADOR : Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación
4. DIAFRAGMA: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador.
5. FOCO: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.

SISTEMA MECÁNICO
SOPORTE: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.
PLATINA: Lugar donde se deposita la preparación.
CABEZAL: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular o Tríocular…
REVÓLVER: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
TORNILLOS DE ENFOQUE: Macrométrico que aproxima el enfoque y micrométrico que consigue el enfoque correcto.

4.- Una vez identificadas las partes del microscopio, deberás usar y manejar cada una de ellas de acuerdo a la guía que se te proporciona. Para terminar aprendiendo a enfocar las diferentes muestras.

MANEJO DEL MICROSCOPIO


  1. Colocar el objetivo de menor aumento en posición de empleo y bajar la platina completamente. Si el microscopio se recogió correctamente en el uso anterior, ya debería estar en esas condiciones.

  2. Colocar la preparación sobre la platina sujetándola con las pinzas metálicas

  3. Comenzar la observación con el objetivo de 4x (ya está en posición) o colocar el de 10 aumentos (10x) si la preparación es de bacterias.

  4. 1. Para realizar el enfoque:
    a.- Acercar al máximo la lente del objetivo a la preparación, empleando el tornillo macrométrico.
    Esto debe hacerse mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de
    incrustar el objetivo en la preparación pudiéndose dañar alguno de ellos o ambos

    b.- Mirando, ahora sí, a través de los oculares, ir separando lentamente el objetivo de la
    preparación con el macrométrico y, cuando se observe algo nítida la muestra, girar el
    micrométrico hasta obtener un enfoque fino.

  5. Pasar al siguiente objetivo. La imagen debería estar ya casi enfocada y suele ser suficiente con mover un poco el micrométrico para lograr el enfoque fino. Si al cambiar de objetivo se perdió por completo la imagen, es preferible volver a enfocar con el objetivo anterior y repetir la operación desde el paso 3. El objetivo de 40x enfoca a muy poca distancia de la preparación y por ello es fácil que ocurran dos tipos de percances: incrustarlo en la preparación si se descuidan las precauciones anteriores y mancharlo con aceite de inmersión si se observa una preparación que ya se enfocó con el objetivo de inmersión.

  6. EMPLEO DEL OBJETIVO DE INMERSIÓN:
    A.- Bajar totalmente la platina
    B.- Subir totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona
    que se va a visualizar y donde habrá que echar el aceite.
    C.- Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión dejándolo a medio camino entre éste y el de
    x40.
    D.- Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre el círculo de luz.
    E.- Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de inmersión.
    F.- Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente toca la gota de
    aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se adosara a la lente.
    G.- Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el objetivo de inmersión y la preparación es mínima, aun menor que con el de 40x por lo que el riesgo de accidente es muy grande.
    H.- Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede volver a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite. Por tanto, si desea enfocar otro campo, hay que bajar la platina y repetir la operación desde el paso 3.
    I.- Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede retirar la preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de inmersión en posición de observación.
    J.- Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando un papel especial para óptica. Comprobar también que el objetivo 40x está perfectamente limpio.

MANTENIMIENTO Y PRECAUCIONES


  1. Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda.
  2. Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo

  3. Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con un papel de filtro o, mejor, con un papel de óptica.

  4. No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio.

  5. Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro (menos recomendable). En cualquier caso se pasará el papel por la lente en un solo sentido y con suavidad. Si el aceite ha llegado a secarse y pegarse en el objetivo, hay que limpiarlo con una mezcla de alcohol-acetona (7:3) o xilol. No hay que abusar de este tipo de limpieza, porque si se aplican estos disolventes en exceso se pueden dañar las lentes y su sujeción.

  6. No forzar nunca los tornillos giratorios del microscopio (macrométrico, micrométrico, platina, revólver y condensador)

  7. El cambio de objetivo se hace girando el revólver y dirigiendo siempre la mirada a la preparación para prevenir el roce de la lente con la muestra. No cambiar nunca de objetivo agarrándolo por el tubo del mismo ni hacerlo mientras se está observando a través del ocular.

  8. Mantener seca y limpia la platina del microscopio. Si se derrama sobre ella algún líquido, secarlo con un paño. Si se mancha de aceite, limpiarla con un paño humedecido en xilol.

  9. Es conveniente limpiar y revisar siempre los microscopios al finalizar la sesión práctica y, al acabar el curso, encargar a un técnico un ajuste y revisión general de los mismos.

Cuestionario Microscopio

I.- LEE CUIDADOSAMENTE Y SUBRAYE LA RESPUESTA CORRECTA.

1.- Es la superficie plana donde se coloca la preparación; tiene un orificio central para el paso de los rayos de luz.

a) Brazo

b) Pie

c) Tornillo micrométrico

d) Platina

2.- Sirve para un ajuste mas fino en la muestra que se va observar.

a) platina

b) Pie

c) Tornillo micrométrico

d) Brazo

3.- Concentra los rayos de la luz en el objeto que se observa

a) Lámpara

b) Condensador

c) Diafragma

d) Espejo

4.- Es la Pieza donde se encuentran montados los objetivos.

a) Revolver

b) Pie

c) Platina

d) Brazo

5.- Enfoca la muestra que se va observar.

a) Platina

b) Brazo

c) Tornillo micrométrico

d) Tornillo micrométrico

6.- Son los lentes mas cercanos al ojo.

a) Brazo

b) Oculares

c) Objetivo

d) Espejo

7.- El microscopio consta de tres objetivos ¿Cuál es?, el que se llama objetivo de inmersión.

a) 40X

b) 10X

c) 4X

d) 100X

8.- Regula la cantidad de luz que debe llegar a la preparación.

a) Lámpara

b) Diafragma

c) Condensador

d) Espejo

9.- Son los lentes que quedan mas cerca del objeto.

a) Espejo

b) Lámpara

c) Diafragma

d) Objetivos

10.- Une al tubo con la platina y sirve para sujetar el microscopio cuando lo movemos.

a) Tornillo micrométrico

b) Platina

c) Brazo

d) Pie

II.- Describa alguna indicaciones importantes en el cuidado del microscopio.

  • Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes. Si no se va a usar de forma prolongada, se debe guardar en su caja dentro de un armario para protegerlo del polvo
  • Nunca hay que tocar las lentes con las manos
  • limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o con papel de filtro
  • Mantener seca y limpia la platina del microscopio